Os ácidos biliares são os componentes mais abundantes da bile e são sintetizados no fígado a partir do colesterol e excretados na forma de sais de sódio. No intestino, atuam diretamente sobre as gorduras como agentes emulsificantes, permitindo a ação de enzimas específicas e facilitando a absorção de lipídeos, colesterol e vitaminas lipossolúveis.  Os ácidos biliares também otimizam a atividade de várias enzimas digestivas, facilitam a absorção de cálcio e ferro, estimulam a liberação de motilina secreção de muco, promover motilidade colônica e absorção de água e eletrólitos, efeitos bacteriostáticos e podem se ligar a enterotoxinas intestinais.

As bactérias intestinais atuam sobre os ácidos biliares, transformando-os em sais biliares secundários, que por sua vez são absorvidos pela mucosa intestinal e são reciclados no fígado, via circulação portal, para serem reutilizados. Após as refeições, é possível identificar aumento dos níveis plasmáticos dos ácidos biliares - em gatos e cães, o pico de concentração ocorre aproximadamente duas horas após a ingestão de uma refeição.  

A medição dos ácidos biliares séricos  totais (TSBA) fornece resultados sensíveis de função hepática, uma vez que disfunções hepáticas resultam em falha de captação dos ácidos biliares e consequente aumento destes na circulação periférica. Obstruções hepáticas e/ou biliares também resultam no aumento dos níveis dos ácidos biliares. Os ácidos biliares são de maior uso para detectar anomalias congênitas do sistema porta e para provar uma disfunção hepática nos pacientes não-ictéricos quando seus sinais clínicos estão vagos e outros parâmetros clínico-patológicos são sugestivos de insuficiência hepática.

Na maioria dos cães, a dosagem de ácidos biliares de jejum geralmente é suficiente para determinar presença ou ausência de doença hepatobiliar adquirida funcionalmente significativa. Ambos os ensaios (dosagem de ácidos biliares em jejum e pós prandial) devem ser realizados se houver suspeita de desvios portossistêmicos, pois não é incomum que a dosagem apresente-se associada a uma concentração normal de jejum, mas com elevação pronunciada do nível pós-prandial. O ensaio de TSBA em jejum é menos sensível e consideravelmente menos específico do que um ensaio de amônia sanguínea na detecção de desvios portossistêmicos. O ensaio TSBA pós-prandial produz informações semelhantes ao teste de tolerância à amônia, mas é muito mais fácil de executar e não representam um risco para pacientes com encefalopatia hepática.

Interferentes analíticos e limitações do teste:  A dosagem de ácidos biliares séricos totais têm várias limitações. Eles não permitem que diagnósticos específicos sejam feitos, embora a detecção de elevação pós-prandial de alta amplitude possa reforçar a suspeita de shunt e valores próximos a 100 µmol / L podem apoiar o diagnóstico de encefalopatia hepática em animais com sinais clínicos consistentes. Ensaios pós-prandiais podem não ser viáveis ​​em pacientes anoréticos. A hipomotilidade intestinal pode reduzir a sensibilidade do ensaio pós-prandial. A concentração pós-prandial também pode er subestimada se a refeição consumida tiver sido inadequada para estimular o esvaziamento gástrico ou a contração da vesícula biliar, se tiver ocorrido atraso no esvaziamento ou se houver hipermotilidade intestinal. O mesmo vale para os animais com doença ilíaca ou ressecção ilíaca, mesmo que possa haver um aumento compensatório na absorção de ácidos biliares do cólon. Em pacientes com colecistectomia, o ciclo entero-hepático dos ácidos biliares estão aumentados durante o jejum, de modo que a concentração de TSBA em jejum tende a ser levemente maior e a concentração pós-prandial é ligeiramente menor. A hemólise e a lipemia da amostra podem causar resultados imprecisos em ensaios espectrofotométricos. Fármacos tais como rifamicinas, ácido fusídico, ciclosporina e bumetanida podem inibir especificamente a captação dos hepatócitos de ácidos biliares para aumentar a concentração no soro. Pacientes em uso de ácido ursodexicólico não podem fazer o teste.

Coletar o sangue em frasco com ativador de coágulo (tampa vermelha ou amarela). Conservar o frasco sobre refrigeração 2° a 8°C. Identificar a amostra com nome do paciente, nome do responsável, data e horário da coleta.

Tempo para envio ao laboratório: 6 horas